histologi er studiet av menneskelig vev. Dette begrepet består av to begreper fra det greske og latinske språket. “Histos” betyr “vev” på gresk og “logoer” betyr “undervisning” på latin.
Hva er histologien?
I histologi bruker leger tekniske hjelpemidler som et lysmikroskop for å identifisere strukturen til forskjellige strukturer.
Den mikroskopiske anatomien deler organene i henhold til komponentene deres, som blir mindre og mindre jo dypere undersøkelsene går i de forskjellige strukturene. Områdene med tidlig diagnose, patologi, anatomi og biologi omhandler hovedsakelig dette medisinske feltet.
Behandlinger og terapier
Den mikroskopiske anatomi deler organene i tre grupper i henhold til deres størrelse og komponenter. Histologi som studier av menneskelig vev er en viktig komponent i biologi, medisin, anatomi og patologi.
Cytologi går allerede dypere inn i menneskets vevslag og tar for seg celleteori og den funksjonelle sammensetningen. Molekylærbiologi er dedikert til de minste komponentene i menneskelige celler, molekylene, som også er kjent som partikler. Hovedoppgaven til histologi er tidlig diagnose av svulster. Ved å bruke de beste undersøkelsesmetodene finner legene ut om det er patologiske forandringer, dvs. ondartede svulster, eller om vevet fremdeles er sunt og svulstene er godartede. Videre er histologene i stand til å oppdage bakterielle, parasittiske og inflammatoriske sykdommer så vel som metabolske sykdommer.
Vevsteorien danner også utgangspunktet for senere terapeutiske tilnærminger som er basert på de histologiske funnene. Histologer og patologer bruker histologi for å gjøre "små ting store eller synlige". En del av det syke vevet fjernes fra pasienten med prøveekseksjon (biopsi). En patolog undersøker deretter denne vevsprøven ved å lage mikrometers tynne skjæremønster. I neste trinn blir disse mønstrene farget og sett under lysmikroskopet. Noen ganger brukes også et høyoppløselig elektronmikroskop, men det brukes hovedsakelig i forskning. Før undersøkelsen behandler histoteknologi hvordan vevet behandles. En medisinsk teknisk assistent (MTA) er ansvarlig for dette trinnet. Det fikser vevet for å oppnå stabilisering.
Assistenten ser på det kuttede vevet makroskopisk (med øyet), tapper det og impregnerer det i flytende parafin. Vevsprøven blokkeres deretter i parafin, og i neste trinn blir det laget et snitt med en diameter på 2 til 5 um. Denne er festet til glassgliden og farget. Den rutinemessige moderne teknikken er produksjonen av et FFBE-preparat, et "formalin-fast parafininnstøpt vev". Vevsprøven er farget i et hematoksylin-eosin. Denne prosessen tar en dag eller to fra første til siste trinn. En mindre tidkrevende vevsundersøkelse er den raske seksjonsundersøkelsen. Dette gjøres alltid når kirurgen trenger informasjon om det fjernede vevet under en operasjon.
Hvis kirurgen for eksempel fjerner en svulst fra nyren, trenger han informasjon om vevets natur under operasjonen. Han trenger å vite om svulsten allerede er fullstendig fjernet, eller om ondartet vev i kantsonene indikerer ytterligere patologiske forandringer. Funnene av den raske seksjonsundersøkelsen bestemmer det videre løpet av operasjonen. Vevsprøven fryses og stabiliseres ved -20 ° C i løpet av ti minutter. En 5 til 10 um seksjon er laget ved bruk av et mikrotom, festet til en glassplate som et lysbilde og farget. Funnene blir umiddelbart sendt videre til operasjonssalen slik at kirurgen kan ta en beslutning om det videre operasjonsforløpet.
Diagnose og undersøkelsesmetoder
De viktigste tekniske hjelpemidlene i histologi er de forskjellige fargemetodene. Histologi deler cellestrukturene i henhold til deres fargereaksjon på fargestoffet som brukes. Dette er biologiske farger. Neutrofile cellestrukturer er ikke farget av verken sure eller basiske fargestoffer.
Ingrediensene er lipofile. Basofile cellestrukturer fungerer med grunnleggende fargestoffer som hematoksylin. Acidofile cellestrukturer er farget av basiske og sure fargestoffer som eosin, sur fuchsin og pikrinsyre. Andre cellestrukturer er nukleofile og argyrofile. Argyrofile cellestrukturer binder sølvioner, nukleofile DNA-bindinger og basiske fargestoffer. Hematoksylin-eosinfarging (HE-farging) brukes ofte som rutinemessig og oversiktsfarging av datastyrte fargemaskiner. Samtidig brukes spesielle manuelle fargestoffer til individuelle spørsmål.
Histokjemiske undersøkelser presenterer et sammensatt bilde av kjemisk-fysiske prosesser med hensyn til elektropsorpsjon, diffusjon (distribusjon) og grensesnittadsorpsjon i forbindelse med ladningsfordelingene i fargestoffmolekylene. Den ioniske bindingen skaper den viktigste bindekraften ved å binde sure fargestoffer til basiske proteiner. I histokjemiske prosesser reagerer et fargestoff på en vevskomponent. Histokjemiske metoder av enzym forårsaker fargeutvikling gjennom aktiviteten til cellens egne enzymer. Klassisk histologi har blitt supplert med immunhistokjemi siden 1980-tallet. Dette beviser celleegenskapene på grunnlag av en antigen-antistoffreaksjon. Dette synliggjøres ved hjelp av en flerseksjonsteknikk basert på fargereaksjonen på stedet for antigenet (protein).
Hybridisering in situ ble oppfunnet et tiår senere. Visse nukleotidsekvenser blir detektert ved å smelte dobbeltstrenget DNA og spontant dokking av enkeltstrenger ved bruk av RNA eller DNA. Nukleinsyresekvensene vises ved hjelp av sonder med fluorokrom merking. Denne metoden er kjent som fluorescens in situ hybridisering (FISH).
Viktige fargemetoder er azan-farging, preussisk blå reaksjon, Golgi-farging, gramfarging og Giemsa-farging. Disse fargningsmetodene fungerer med røde cellekjerner, rødlige cytoplasma, blå retikulære fibre og kollagener, røde muskelfibre, påvisning av "trivalente jernioner", sølvfarging av individuelle ioner, bakteriedifferensiering og differensiering av blodcellefarging.
.jpg)
